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Logo of nihpaAbout Author manuscriptsSubmit a manuscriptHHS Public Access; Author Manuscript; Accepted for publication in peer reviewed journal;
 
Med Sci (Paris). Author manuscript; available in PMC 2010 October 14.
Published in final edited form as:
PMCID: PMC2954620
NIHMSID: NIHMS110263

Histone acetylation and chromatin assembly

Chez l'humain, environ 2 mètres d'ADN sont compactés sous forme de chromatine dans un noyau cellulaire dont le diamètre est de 10 micromètres. Le nucléosome est l'élément structurel de base de la chromatine et comprend 147 paires de bases d'ADN enroulées à la surface d'un octamère d'histones. Ce dernier est formé à partir d'un tétramère (H3-H4)2 et de deux dimères d'histones H2A-H2B. Plusieurs processus pour lesquels l'accès à l'ADN est primordial, tels la transcription, la réplication et la réparation, nécessitent des altérations transitoires de la chromatine. Ces changements structuraux de la chromatine sont souvent facilités par des modifications covalentes et réversibles des histones. Par exemple, l'acétylation du nucléosome joue un rôle de premier plan dans l'activation de la transcription. La réplication de l'ADN pose quant à elle un défi particulier à la cellule car elle implique non seulement des altérations importantes aux nucléosomes pré-existants, mais aussi la formation de nouveaux nucléosomes à l'échelle du génome (Figure 1). L'assemblage de novo de nucléosomes durant la réplication est crucial puisqu'une inhibition de la synthèse d'histones lors de la phase S est létale. Durant la réplication, les chaperones d'histones CAF1 et Rtt106 déposent des formes modifiées de H3 et H4 sur l'ADN [1]. Plusieurs lysines sont acétylées dans les domaines N-terminaux des molécules de H3 et H4 néo-synthétisées et ce, avant même leur déposition sur l'ADN [2,3]. Ces modifications post-traductionnelles sont conservées de la levure à l'homme et jouent des rôles importants, bien que partiellement redondants, dans la voie d'assemblage des nucléosomes. In vivo, la mutation simultanée des lysines acétylées sur les régions N-terminales de H3 et H4 provoque en effet une diminution marquée de l'assemblage de nucléosomes durant la phase S et une perte de viabilité [4,5]. Cependant, bien que cette acétylation N-terminale des histones néo-synthétisées soit connue depuis presque 40 ans, son rôle exact dans l'assemblage de nucléosomes n'est toujours pas établi [5].

Figure 1
La réplication et la réparation de l'ADN nécessitent un assemblage de nucléosomes à partir d'histones néo-synthétisées

Chez les levures S. cerevisiae et S. pombe, toutes les molécules d'H3 déposées à travers le génome durant la réplication sont aussi acétylées sur la lysine 56 (K56) [6,7]. Cette lysine est située près du point d'entrée et de sortie de l'ADN, mais son acétylation n'altère que marginalement la structure du nucléosome. Néanmoins, les levures porteuses d'un allèle d'H3 non acétylable sur la lysine 56 (H3 K56R) sont extrêmement sensibles aux agents génotoxiques qui endommagent l'ADN lors de la réplication, dont plusieurs sont couramment utilisés en chimiothérapie du cancer. Une collaboration entre nos équipes de recherche a récemment permis d'élucider une fonction importante de l'acétylation d'H3 K56 chez la levure S. cerevisiae. Les nouvelles molécules d'H3 associées à CAF1 et Rtt106 sont acétylées sur K56 et cette modification facilite l'assemblage rapide de nucléosomes durant la réplication en augmentant l'affinité de CAF1 et Rtt106 pour l'histone H3, et ce aussi bien in vitro qu'in vivo [1]. En accord avec l'hypothèse que le défaut d'assemblage de nucléosomes contribue aux phénotypes du mutant H3 K56R, des levures mutantes dans lesquelles les chaperones CAF1 et Rtt106 sont toutes deux absentes ont un degré de sensibilité aux agents génotoxiques approchant celui de cellules déficientes en acétylation d'H3 K56. Nos résultats sont généralement en accord avec ceux d'un second article paru simultanément. Cet article montre que l'acétylation d'H3 K56 est impliquée dans l'assemblage de nucléosomes couplé à la réparation d'une cassure double brin dans l'ADN [8]. Ces observations sont importantes puisqu'elles démontrent qu'une des fonctions de l'acétylation des histones néo-synthétisées est de faciliter l'assemblage de nucléosomes couplé à la synthèse d'ADN non seulement durant la réplication, mais aussi lors de la réparation.

Plusieurs questions restent cependant sans réponse. La double délétion de CAF1 et Rtt106 sensibilise moins les cellules mutantes aux agents génotoxiques que la perte d'acétylation sur H3 K56. Ceci suggère que certaines fonctions de l'acétylation d'H3 K56 ne sont pas médiées par ces deux protéines. D'autre part, une surexpression de la sirtuine Hst3, une enzyme responsable de la désacétylation d'H3 K56 après sa déposition sur l'ADN, confère aussi une forte sensibilité aux agents génotoxiques [9]. Ce résultat est compatible avec un rôle important de cette modification après la déposition d'H3 dans la chromatine. Finalement, il est à propos de noter que les études réalisées jusqu'à présent suggèrent que l'acétylation de H3 K56 n'est présente qu'à faible stoechiométrie chez l'humain [10]. Il est donc plausible que d'autres sites de modification jouent un rôle similaire à l'acétylation de H3 K56 chez les mammifères. La découverte de ces sites représente une étape importante à franchir dans l'étude de l'assemblage de nucléosomes couplé à la réplication et à la réparation.

Remerciements

Les travaux de recherche d'Alain Verreault et de Zhiguo Zhang sont respectivement subventionnés par les Instituts de Recherche en Santé du Canada (IRSC) et « National Institutes of Health » (NIH). Hugo Wurtele bénéficie d'une bourse post-doctorale de la Société de Recherche sur le Cancer (SRC) du Canada. L'infrastructure de recherche de l'IRIC est financée par le Fonds de la Recherche en Santé du Québec (FRSQ) et la Fondation Canadienne pour l'Innovation (FCI).

References

1. Li Q, Zhou H, Wurtele H, et al. Acetylation of histone H3 lysine 56 regulates replication-coupled nucleosome assembly. Cell. 2008;134:244–255. [PMC free article] [PubMed]
2. Verreault A, Kaufman PD, Kobayashi R, et al. Nucleosome assembly by a complex of CAF-1 and acetylated histones H3/H4. Cell. 1996;87:95–104. [PubMed]
3. Zhou H, Madden BJ, Muddiman DC, et al. Chromatin assembly factor 1 interacts with histone H3 methylated at lysine 79 in the processes of epigenetic silencing and DNA repair. Biochemistry. 2006;45:2852–2861. [PubMed]
4. Ma XJ, Wu J, Altheim BA, et al. Deposition-related sites K5/K12 in histone H4 are not required for nucleosome deposition in yeast. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998;95:6693–6698. [PubMed]
5. Blackwell JS, Jr, Wilkinson ST, Mosammaparast N, et al. Mutational analysis of H3 and H4 N termini reveals distinct roles in nuclear import. J Biol Chem. 2007;282:20142–20150. [PubMed]
6. Masumoto H, Hawke D, Kobayashi R, et al. A role for cell-cycle-regulated histone H3 lysine 56 acetylation in the DNA damage response. Nature. 2005;436:294–298. [PubMed]
7. Xhemalce B, Miller KM, Driscoll R, et al. Regulation of histone H3 lysine 56 acetylation in Schizosaccharomyces pombe . Schizosaccharomyces pombe. J Biol Chem. 2007;282:15040–15047. [PubMed]
8. Chen CC, Carson JJ, Feser J, et al. Acetylated lysine 56 on histone H3 drives chromatin assembly after repair and signals for the completion of repair. Cell. 2008;134:231–243. [PMC free article] [PubMed]
9. Maas NL, Miller KM, DeFazio LG, et al. Cell cycle and checkpoint regulation of histone H3 K56 acetylation by Hst3 and Hst4. Mol Cell. 2006;23:109–119. [PubMed]
10. Garcia BA, Hake SB, Diaz RL, et al. Organismal differences in post-translational modifications in histones H3 and H4. J Biol Chem. 2007;282:7641–7655. [PubMed]